苍术酮对肝癌HepG2细胞活性、凋亡的影响及其相关机制

杨雪丽，薛建华，陈天阳，平 键，侯天禄，陈建杰,，成 扬,

1 上海中医药大学附属曙光医院 肝病研究所，上海 201203；2 上海浦东新区传染病医院 肝病科，上海 201299

肝癌是最常见的恶性肿瘤性疾病，据统计，2020年全球新增肝癌患者90.6万人(在所有新发癌症的占比4.7%)，居全部癌症发病第6位，有83万人死于肝癌(在所有癌症中占比8.3%)，居全部癌症死亡第3位[1]。在我国，肝癌的发病率和死亡率均占全球总数的50%以上，占亚洲总数的70%左右[2]。近年来，尽管肝癌的早期诊断技术和治疗水平不断提高，但患者的5年生存率仍不理想[3]。早期肝癌患者治疗方法有切除、肝移植或消融治疗等，但由于肝癌起病隐匿，一旦确诊常是晚期，晚期肝癌患者由于肿瘤负荷较大(伴有血管侵犯和肝外转移)，介入治疗、消融治疗和放疗效果有限，肝癌治疗指南对晚期肝癌推荐全身系统性治疗[4-6]。中医药的治疗可贯穿肝癌治疗的全过程，在改善患者临床症状，减少术后复发和转移，提高患者生存质量等方面发挥着良好的协同作用[7]。近年来，中药及中药有效成分已成为开发新型抗肝癌药物的重要来源[8]。苍术酮(Atractylone)是一种从苍术(Atractylodeslancea)和北苍术(Atractylodeschinensis)中分离出来的倍半萜类成分，现代药理表明苍术酮具有多种药理活性，如改善溃疡病灶血液循环、利尿、抗炎、抗肿瘤、保肝、降血糖、抗菌、抗病毒和调节免疫等作用[9-10]。本实验探讨苍术酮对肝癌HepG2细胞增殖和凋亡的作用及其作用机制，为苍术酮的进一步开发利用提供理论和实验依据。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

1.1.1 细胞株 肝癌HepG2细胞购自中国科学院上海细胞库，目录号为SCSP-510，由上海中医药大学附属曙光医院肝病研究所负责传代，培养。

1.1.2 药物 苍术饮片购自上海华东药业公司，由浙江中医药大学鉴定，标本(编号y20141022)存放于浙江医学院药学系。

1.1.3 试剂 胎牛血清(FBS，美国Gibco公司，批号10437-028)；二甲基亚枫溶液(DMSO，上海源叶生物科技公司，批号20170204)；高糖培养基(DMEM)，青霉素-链霉素溶液(美国Hyclone公司，批号分别为SH3002201，sv30010)；RIPA裂解液，胰酶细胞消化液，BCA蛋白浓度测定试剂盒，SDS-PAGE凝胶(上海碧云天生物技术有限公司，批号分别为P0013B，C0201，P0012，P0012A)；MTT试剂盒(北京索莱宝科技有限公司，货号M1020)；Annexin V-FITC凋亡试剂盒(美国BD公司，批号为559763)；B细胞淋巴瘤因子(Bcl-2)，Bcl-2相关x蛋白(Bax)，甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)(武汉华美生物工程有限公司，批号分别为CSB-E08853h，CSB-E09344h，CSB-E13911h)；半胱氨酸蛋白酶-3(Cleaved caspase-3，英国Abcam公司，批号ab13847)。

1.1.4 仪器 多功能酶标仪，转膜仪(美国Bio-Rad公司，型号分别为iMark，1704150)；odyssey红外荧光成像系统(美国LI-COR公司，型号9120)；CO2培养箱(美国Thermo公司，型号51030286)。

1.2 方法

1.2.1 苍术酮的制备 采用超临界二氧化碳萃取法对苍术酮进行提取，按照本课题组前期经验进行[11]。

1.2.2 细胞培养与分组 HepG2细胞在含10%FBS和1%双抗的培养基中培养，置于37 ℃，5%CO2的培养箱中孵育，待细胞生长密度达到80%时，用胰酶消化传代培养。实验分为4组：空白对照组，苍术酮低剂量组(5 μmol/L)、中剂量组(10 μmol/L)、高剂量组(20 μmol/L)。

1.2.3 MTT法检测HepG2细胞活性 将HepG2细胞悬液以每孔100 μL接种于96孔板中(1×104/孔)，孵育过夜。苍术酮用药组分别加入含有不同浓度的苍术酮(5、10、20 μmol/L)的溶液，对照组加入等体积的0.1%DMSO。分别孵育24、48、72 h，孵育结束后加入20 μL MTT溶液(5 mg/mL)，在培养箱中孵育4 h。实验结束后，吸弃上清液，加入150 μL DMSO，37 ℃条件下震荡10 min溶解沉淀。使用酶标仪测定细胞在570 nm处的吸光度(OD值)。

1.2.4 流式细胞术检测HepG2细胞凋亡 将HepG2细胞悬液以每孔100 μL接种于6孔板中(1×106/孔)，分组培养24 h，收集细胞并用预冷的PBS洗涤细胞2次。根据Annexin V-FITC凋亡试剂盒说明书对细胞进行染色，并通过流式细胞仪检测凋亡细胞。

1.2.5 流式细胞术检测HepG2细胞线粒体膜电位 将HepG2细胞悬液以每孔100 μL接种于6孔板中(1×106/孔)，培养箱中孵育过夜。待细胞贴壁后分组培养24 h，培养结束后，使用PBS洗涤2次。加入1 mL Rhodamine 123(5 μg/mL)溶液，培养箱中孵育30 min，使用预冷的PBS洗涤细胞2次，流式细胞仪检测线粒体膜电位。

1.2.6 DCFH-DA法检测HepG2细胞内活性氧(ROS)水平 将HepG2细胞悬液以每孔100 μL接种于6孔板中(1×106/孔),待细胞贴壁后分组培养48 h，培养结束后，使用PBS洗涤2次，更换DCFH-DA培养基，按照ROS试剂盒说明书进行后续操作，在荧光显微镜下观察细胞荧光强度。

1.2.7 蛋白质印迹法检测各组细胞中Bcl-2、Bax及Cleaved caspase-3的表达 将HepG2细胞悬液以每孔100 μL接种于6孔板中(1×106/孔)，在培养箱中孵育过夜。吸弃旧液，分组培养48 h，PBS洗涤细胞2次，使用含有PMSF的RIPA裂解液提取细胞的总蛋白质，收集的细胞在4 ℃下以1000g离心25 min。BCA试剂盒测定细胞蛋白浓度，SDS-PAGE电泳和抗体孵育，ECL化学发光试剂显色使蛋白质条带可视化，获取Bcl-2、Bax、Cleaved caspase-3和GAPDH[12]的条带图片，并在Image J系统6.0版本下进行定量分析。

1.2.8 Transwell实验检测苍术酮对HepG2细胞迁移和侵袭的影响 取对数期生长的HepG2细胞给予不同浓度的苍术酮分组培养24 h。收集细胞，离心，将HepG2细胞悬液按200 μL/室(5×104/孔)加入Transwell小室的上室，同时将500 μL含10%FBS的培养基加入到下室，于37 ℃、5%CO2培养箱内孵育24 h。吸弃培养基，并弃去上室未迁移的细胞，用预冷的95%乙醇固定10 min，0.1%结晶紫染色15 min，光学显微镜下观察，随机选择5个视野计数迁移的细胞数量。

2 结果

2.1 苍术酮对HepG2细胞增殖抑制的影响 苍术酮处理肝癌HepG2细胞24、48、72 h后，MTT法检测HepG2细胞活性。在苍术酮处理细胞24、48 h后，与对照组同一时间相比，苍术酮低、中、高剂量组的细胞活性呈下降趋势，且差异均有统计学意义(P值均<0.05)(图1)。此外，苍术酮处理HepG2细胞72 h的半数抑制率(IC50值)为26.19 μmol/L(图1)。

2.2 苍术酮对HepG2细胞凋亡的影响 对照组和苍术酮低、中、高剂量组的细胞凋亡率分别为0.32%、14.34%、29.32%和50.12%，HepG2细胞凋亡率随着苍术酮药物浓度的增加而升高，与对照组比较，差异均有统计学意义(P值均<0.05)；中、高剂量组细胞的凋亡率，与低剂量组比较，差异亦有统计学意义(P值均<0.05)(图2)。

图2 苍术酮对HepG2细胞凋亡率的影响

2.3 苍术酮对HepG2细胞线粒体膜电位丢失的影响 如图3所示，对照组有5.65%的细胞丢失膜电位，苍术酮低、中、高剂量组分别有10.5%、16.5%和19.2%的细胞损失线粒体膜电位，4组间差异无统计学意义(P>0.05)。

注:a,对照组；b，5 μmol/L组；c,10 μmol/L组；d,20 μmol/L组。

2.4 苍术酮对HepG2细胞内ROS水平的影响 如图4所示，对照组HepG2细胞中ROS的荧光强度较低，经不同浓度的苍术酮处理后，与对照组比较，苍术酮低、中、高剂量组HepG2细胞中ROS的荧光强度明显升高(P值均<0.05)。

注:a,对照组；b，5 μmol/L组；c,10 μmol/L组；d,20 μmol/L组，e，苍术酮对HepG2细胞内ROS水平定量分析。

2.5 苍术酮对HepG2细胞迁移的影响 如图5和表1所示，在对照组中，大量的HepG2细胞从上室迁移到下室，在苍术酮处理HepG2细胞48 h后，随着苍术酮药物浓度的增加，对HepG2细胞迁移抑制效应也逐渐增加。与对照组比较，苍术酮低、中、高剂量组的细胞迁移数量明显降低(P值均<0.05)；中、高剂量组的细胞迁移数量明显低于低剂量组(P值均<0.05)。

表1 苍术酮对HepG2细胞迁移的影响

注:a,对照组；b，5 μmol/L组；c,10 μmol/L组；d,20 μmol/L组。

2.6 苍术酮对HepG2细胞Bcl-2，Bax和Cleaved caspase-3蛋白表达的影响 如图6所示，与对照组比较，苍术酮低、中、高剂量组能显著抑制抗凋亡因子Bcl-2的表达，促进凋亡因子Bax和Cleaved caspase-3的表达，差异均有统计学意义(P值均<0.05)。对照组和苍术酮用药组的Bax/Bcl-2蛋白的比率分别为0.20、0.31、1.60、3.78。

图6 苍术酮对HepG2细胞中Bcl-2，Bax和Cleaved caspase-3 蛋白表达水平的影响

3 讨论

古代文献并无“肝癌”病名，根据该疾病的典型特征和临床表现，可将其归属于中医“癥瘕”“胁胀”“肝积”“伏梁”“黄疸”“肝著”“积聚”等[7]。苍术是多年生菊科植物苍术的干燥根茎，味辛、苦，性温，归脾、胃、肝经，有燥湿健脾、祛风散寒、明目等功效，常用于治疗湿阻中焦、脘腹胀满、泄泻、水肿、风湿痹痛、风寒感冒、夜盲、眼干涩等病症[13]，有研究[14]报道苍术对肺癌、胃癌、食管癌、胆管癌、肝癌等有抑制作用，表现出抗肿瘤的药理活性。苍术酮是从苍术中分离出来的倍半萜类化合物，是中药苍术的有效成分之一，周域等[15]研究发现苍术酮能与维甲酸β受体紧密结合，产生维甲酸样抗肿瘤作用。耿炜等[16]研究发现苍术酮能抑制结直肠癌细胞HT29细胞的增殖，并促进细胞凋亡，有抗结直肠癌的作用。本研究主要探讨苍术酮对肝癌HepG2细胞凋亡和迁移的作用和其可能作用机制，为苍术酮应用与肝癌的临床应用提供理论依据。

细胞凋亡又称为细胞程序性死亡，是由外界刺激因素诱发后，经一系列基因活化及调控细胞有序的、自主的主动死亡过程[17]，细胞凋亡在细胞发育、组织稳态以及对抗有害和潜在危险细胞的防御机制中发挥着重要作用，线粒体信号通路在细胞凋亡中发挥着较为重要的作用[18]。线粒体损伤的特征是线粒体膜电位的丢失使膜通透性增加，线粒体中细胞凋亡因子如细胞色素C释放到细胞质中，在细胞质中形成凋亡复合物，诱导细胞凋亡[19]。此外，ROS可促进细胞色素C从线粒体上解离，因此ROS水平升高可进一步介导线粒体途径细胞凋亡[20]。本研究表明苍术酮可显著促进肝癌HepG2细胞凋亡，并诱导线粒体膜电位的丢失，增加肝癌HepG2细胞内ROS水平，进一步促进线粒体膜通透性增加和线粒体膜电位的丢失。

研究[21]表明，在众多的凋亡相关基因中，Bcl-2基因家族在凋亡过程中起重要调节作用，它可以在细胞周期的任何阶段直接抑制细胞凋亡，延长细胞存活周期并诱发细胞癌变[22]。在正常状态下，Bax存在于细胞质中并与Bcl-2结合形成异二聚体，从而使促凋亡蛋白稳定于细胞质中，并抑制细胞凋亡[23]。Bax/Bcl-2的比率是诱导细胞凋亡作用强弱的关键因素[24-25]，若Bcl-2蛋白的含量相对下降，Bax将移位于线粒体膜上，刺激线粒体释放促凋亡因子，激活caspase级联反应，诱导细胞凋亡[26]。Caspase-3是caspase家族中参与细胞凋亡的关键蛋白酶之一，并位于细胞凋亡信号传导通路的中心位置，Cleaved caspase-3是裂解后的caspase-3，是诱导凋亡的关键因子，是反映细胞凋亡可靠的指标[27-28]。本研究表明苍术酮显著增加促凋亡蛋白Bax和Cleaved caspase-3的表达水平，降低抗凋亡蛋白Bcl-2的表达。这些结果表明，苍术酮可能是通过降低线粒体膜电位，增加细胞内ROS水平，诱导的细胞凋亡。

综上所述，本研究表明苍术酮对HepG2细胞具有体外其抑制活性、迁移的作用，并通过线粒体途径诱导细胞凋亡。该研究结果为后续苍术酮在体内对肝癌活性的研究和进一步研究其抑制肿瘤迁移的作用机制提供实验基础，并为苍术酮治疗肝癌的临床应用提供参考。

利益冲突声明：本研究不存在研究者、伦理委员会成员、受试者监护人以及与公开研究成果有关的利益冲突。

作者贡献声明：杨雪丽、薛建华、陈天阳负责课题设计，实验操作及撰写论文；平键、侯天禄负责课题设计，拟定写作思路，修改论文；陈建杰、成扬指导撰写文章并最后定稿。