不同养殖模式下小反刍兽疫母源抗体消长规律

2018-03-14 06:37:08李文良许宝军唐朝忠张纹纹李基棕杨蕾蕾侯福银王建辉陈应江江杰元
江苏农业科学 2018年3期
关键词:兽疫母源月龄

郝 飞, 李文良, 毛 立, 许宝军, 唐朝忠, 张纹纹, 李基棕, 杨蕾蕾, 侯福银, 时 凯, 王建辉, 魏 勇, 陈应江, 江杰元

(1.江苏省农业科学院兽医研究所/农业部兽用生物制品工程技术重点实验室/国家兽用生物制品工程技术研究中心,江苏南京 210014; 2.江苏省盱眙县动物疫病预防控制中心,江苏盱眙 211700; 3.江苏沿海地区农业科学研究所,江苏盐城 224002; 4.江苏省睢宁县畜牧兽医技术指导站,江苏睢宁 221200)

通信作者:江杰元,博士,研究员,主要从事牛羊传染病研究。E-mail:1776556843@qq.com。

小反刍兽疫(Peste des petits ruminants,PPR)是由小反刍兽疫病毒(Peste des petits ruminants virus,PPRV)引起山羊和绵羊等小反刍动物的一种急性、烈性传染病,是严重威胁和危害养羊业发展的重要病毒性疾病。PPR是OIE规定的必须报告的传染病[1],我国将其列为一类动物疫病。该病呈地方流行性,以往主要在撒哈拉以南的非洲、中东及印度流行,近年来呈蔓延趋势,在我国周边多个国家均有该病的发生和流行[2-4]。自2007年我国西藏阿里地区首次发生PPR疫情之后,2013年底再次从新疆传入我国,并迅速蔓延至甘肃、宁夏、内蒙、江苏等20多个省份,对我国的养羊业造成极为严重的损失[5-7]。目前,该病尚未被清除,疫苗免疫是预防该病的有效措施之一,农业部规定我国除北京、福建、海南、湖北及山东(青岛)、广东(深圳)之外所有地区羊群均需免疫PPR弱毒活疫苗[8]。如何监测评价疫苗免疫效果是防制该病的关键,同时也是制定科学免疫程序、做好疫病风险评估及考核免疫政策措施落实情况的基础。当前,国内尚未存在有关小反刍兽疫母源抗体消长规律研究的报道,本研究旨在探讨羔羊PPR母源抗体的消长规律,进而明确不同羊群母源抗体消长规律的差异,从而为制定羔羊的最佳免疫程序,提高免疫合格率,有效的预防和控制小反刍兽疫提供依据。

1 材料与方法

1.1 材料

ID Screen®小反刍兽疫抗体检测试剂盒购自法国ID.vet公司。

1.2 分组

选择江苏省不同地区不同饲养模式和饲养条件下的4个自繁自养规模化山羊养殖场及4个规模化湖羊养殖场(表1)进行PPRV母源抗体的消长规律研究。所选羊场母羊于配种前按说明书免疫小反刍兽疫疫苗,血清抗体检测为阳性。每个养殖场随机选取6只未免疫过PPRV疫苗的1月龄羔羊进行试验,试验期间不进行PPRV免疫,每半个月采血1次,直至4月龄,分离血清,进行PPRV抗体检测。

表1 试验羊场基本情况

1.3 抗体检测及判定方法

PPRV抗体检测按照ID Screen®小反刍兽疫抗体检测试剂盒说明书进行。结果判定为:每个样品阻断率(1-S/N)≥0.5,判定为阳性;0.4≤1-S/N<0.5,判定为可疑;1-S/N<0.4,判定为阴性。

2 结果与分析

由图1可知,江苏句容试验点羔羊在1月龄时小反刍兽疫母源抗体维持在较高水平,且整体离散度小,整齐度高。1~2月龄之间抗体水平有所下降,但下降速度较为平缓,至2月龄时所有羔羊的母源抗体仍均为阳性。2.5~3.0月龄母源抗体水平下降速度加快,3/6的羔羊降至临界值(0.5)以下,至 3.5 月龄时全部转为阴性。江苏盱眙试验点羔羊1月龄母源抗体平均值虽在0.5以上,但离散度较大,整齐度低,个体差异较大,有2只抗体仅为0.172和0.285,至1.5月龄时抗体迅速下降仅剩1只为阳性,此后抗体水平持续下降,至2.5月龄时全部转为阴性。江苏泗阳试验点羔羊1月龄时除1只为可疑,其余羊只的母源抗体水平均在临界值以上,离散度不大,差异较小。其后抗体水平逐步下降,2月龄抗体均值在 0.5 左右,2.5月龄时大部分降为阴性,至3.5月龄时全部转阴。睢宁试验点抗体变化趋势与泗阳相似,5/6的羔羊在1月龄时母源抗体为阳性,1只可疑,但其离散度相对较大,随后抗体水平随月龄的增长逐步下降,2月龄时抗体均值已降至0.5,3月龄全部转阴,且1.5~2.5月龄间抗体水平离散度都比较大。

由图2可知,江苏太仓试验点羔羊1月龄时母源抗体水平均在临界值以上,离散度不大,差异相对较小。2.5月龄时抗体均值已降至0.5以下,3月龄全部转阴。江苏丰县试验点4/6的羔羊在1月龄时母源抗体为阳性,1只可疑,1只为阴性,其离散度相对较大,随后抗体水平随月龄的增长逐步下降,2.5月龄时抗体均值已降至0.5,至3.5月龄全部转阴,且1.5~2.5月龄间抗体水平离散度都比较大。泰州试验点抗体变化趋势与丰县相似,4/6的羔羊在1月龄时母源抗体为阳性,其整体离散度大,差异较大,1.5月龄时抗体均值已降至0.5以下,3.5月龄全部转阴,且整个过程中抗体水平离散度都比较大。盐城试验点羔羊在1~4月龄时小反刍兽疫母源抗体均维持在较高水平,且整体离散度小,整齐度高。

3 讨论与结论

小反刍兽疫是由小反刍兽疫病毒引起的一种高度接触性传染病,是严重制约养羊业发展的烈性传染病之一。该病2007年曾在中国西藏地区小规模暴发,2013年12月至2014年6月在我国大部分养羊大省暴发疫情,给我国养羊业及其相关产业带来了严重的经济损失。近年来,由于采取强制免疫小反刍兽疫活疫苗的免疫政策,使得小反刍兽疫在我国境内得到有效的控制。当前规模化羊场对小反刍兽疫的防控均实施了以疫苗接种为主的综合防制措施,但抗体检测发现时常存在羔羊免疫失败现象,这可能是羔羊首免日龄不当受到母源抗体干扰而导致的。羔羊出生后可以通过吮吸母乳获得母源抗体,母源抗体的存在,可使羔羊在一定时间内被动地得到保护,但又会给免疫接种带来影响。羔羊母源抗体水平过高,接种小反刍兽疫疫苗会被母源抗体所中和,使得羔羊不产生抗体或产生的抗体水平较低,得不到应有的保护。母源抗体过低接种疫苗,则羔羊在免疫空窗期易受到环境中小反刍兽疫病毒的侵袭。因此,研究羔羊小反刍兽疫母源抗体的消长规律就显得十分必要。

本研究在江苏不同地区不同饲养模式的4个规模化山羊养殖场和4个湖羊规模化养殖场进行PPRV母源抗体的消长规律研究,结果表明,不同饲养模式下PPRV母源抗体的持续时间存在较大差异,尤其是放养模式下的差异显著。江苏句容试验点养殖场羔羊母源抗体持续时间较长,因其采取放牧的饲养方式,羔羊未断奶,在试验过程中一直与母羊同群,可随时吮吸母乳,羔羊在1月龄吮乳后对于母源抗体的吸收效率非常高,使得体内的小反刍兽疫抗体效价维持在较高的水平,其后体内的抗体开始逐渐下降,说明此时羔羊已经不能再从母乳中吸收母源抗体进入血液。2月龄后虽然羔羊仍然吮食母乳,但体内小反刍兽疫抗体效价下降最为明显,推测可能与吮乳量的减少及母乳中抗体水平下降有关。江苏盱眙试验点同样是采取放牧的饲养方式,但是所选羔羊在1月龄时母源抗体水平离散度较大,个体差异明显,部分羔羊的母源抗体水平已处于临界值以下,至1.5月龄时仅剩1只为阳性。2处羊场相对应母羊小反刍兽疫抗体检测结果显示,其阻断率均可达0.8以上,表明其抗体水平较高,但其具体滴度可能仍存在较大差异,推测导致羔羊抗体水平差异可能与母羊抗体滴度的不同、羊场饲养管理及卫生条件有关。

江苏泗阳及睢宁试验点养殖场均采取圈养饲养模式,于羔羊出生后60 d左右断奶,这造成所生羔羊母源抗体在2月龄之后逐步转阴。泗阳试验点羔羊所有时间点抗体整齐度较高,而睢宁试验点羔羊各时间点抗体离散度较大,个体差异明显,反映出不同养殖场免疫效果的差异。

太仓、丰县及泰州试验点均为湖羊养殖场,采取圈养饲养模式并于羔羊出生后60 d左右断奶。太仓试验点羔羊所有时间点抗体整齐度较高,而江苏丰县和泰州试验点羔羊所选羔羊在1月龄时母源抗体水平离散度较大,部分羔羊(2/6)的母源抗体水平在临界值以下,各时间点抗体离散度较大,反映出不同养殖场免疫效果存在较大差异。盐城试验点湖羊采取圈养育肥的饲养模式,羔羊出生后50 d断奶,所检羊群在1~4月龄时小反刍兽疫母源抗体均维持在较高水平,且整体离散度小,整齐度高。该试验场能繁母羊在正常免疫PPRV疫苗的同时,于母羊配种前加强免疫1次,且2次免疫相隔不超过2个月,这可能是造成母源抗体长时间维持较高水平的原因。

综上所述,虽然PPR疫苗已被证实具有良好的免疫保护效果,但在生产实践中,母源抗体的变化规律并不一致,须要要做好母羊和羔羊小反刍兽疫抗体水平的监测,根据监测结果调整免疫程序,这样才能切实提高免疫效果,避免小反刍兽疫的发生。

参考文献:

[1]World Organisation for Animal Health(OIE). Peste des petits ruminants(PPR)[EB/OL]. (2016-05-20)[2016-08-30]. http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Media_Center/docs/pdf/Disease_cards/PPR-EN.pdf.

[2]Dhar P,Sreenivasa B P,Barrett T,et al. Recent epidemiology of pestedes petits ruminants virus (PPRV)[J]. Veterinary Microbiology,2002,88(2):153-159.

[3]Banyard A C,Parida S,Batten C,et al. Global distribution of pestedes petits ruminants virus and prospects for improved diagnosis and control[J]. Journal of General Virology,2010,91(12):2885-2897.

[4]Abubakar M,Mahapatra M,Muniraju M,et al. Serological detection of antibodies to pestedes petits ruminants virus in large ruminants[J]. Transboundary and Emerging Diseases,2017,64(2):513-519.

[5]Wang Z,Bao J,Wu X,et al. Peste des petits ruminants virus in Tibet,China[J]. Emerging Infectious Diseases,2009,15(2):299-301.

[6]Banyard A C,Wang Z,Parida S. Peste des petits ruminants virus,eastern Asia[J]. Emerging Infectious Diseases,2014,20(12):2176-2178.

[7]Wu X,Li L,Li J,et al. Peste des petits ruminants viruses reemerging in China,2013—2014[J]. Transboundary and Emerging Diseases,2016,63(5):e441-e446.

[8]中华人民共和国农业部兽医局.全国小反刍兽疫免疫和非免疫省份/区域[EB/OL]. (2014-07-09)[2016-08-30]. http://www.syj.moa.gov.cn/dwybfk/201407/t20140704_ 3958926.htm.

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