宁加佳 杜飞雁 王雪辉 王亮根 谷阳光 李亚芳
(中国水产科学研究院南海水产研究所 广东省渔业生态环境重点实验室 农业部南海渔业资源环境科学观测实验站农业部南海渔业资源开发利用重点实验室 广州 510300)
生物群落结构特征的定量分析是比较生物群落是否发生演替的重要基础, 在生态学研究中具有非常重要的作用。传统的研究方法主要根据基本指数如物种组成、丰富度及丰度衡量生物群落的结构特征。但是在不同时空尺度上的物种和功能群是不断发生变化的,尤其是对于动物群落来说(Sheaves, 2006; Heino, 2009),而这些变化并不表明群落的稳定性发生改变。
因此, 可以利用能最终反映能量流动过程的食物网分析, 对群落结构特征进行描述(Lindeman, 1942;Bersier et al, 2002; Kaartinen et al, 2012)。食物网历来都是生态学研究的热点, 实际上食物网主要表现为物种和物种之间的营养关系(Paine, 1980; Polis et al,1996)。营养关系是群落内生物数量变动的重要调节因素, 其变动直接影响种群和群落的结构和动态。
认清动物的食性是理解其营养关系的第一步,但是想要定量的收集它们的食物信息相当困难。过去定量研究的手段主要通过胃含物分析法进行, 但此方法在食物辨认、反映食物的吸收和估算营养级等方面还存在着一些不足(Bitterlich et al, 1984; Michener et al, 1994; Gu et al, 1996)。随着技术的发展, 稳定同位素分析方法已经成为研究食物网营养结构的重要手段之一(Fry, 2006), 该方法可提供物种时空变化整合过程中长期积累的营养数据, 能准确便捷地反映各种生物的营养信息(Michener et al, 1994)。碳稳定同位素比值(δ13C)常用于判断生物间的营养关系(DeNiro et al, 1978; Fry et al, 1984), 氮稳定同位素比值(δ15N)能计算消费者在食物网中的营养位置(Cabana et al, 1996; Vander Zanden et al, 1999)。此外,Layman等(2007a)根据生态形态学研究中的物种形态特征二维表示法, 提出了基于δ13C—δ15N量化的营养结构的群落范围指标, 这些指标不仅可以量化食物网的营养多样性程度和冗余程度, 而且还能用于描述物种水平的生态位宽度和重叠度, 评价每个物种在食物网中的营养生态位及其作用。近年来, 该方法已广泛应用于环境变化及生物干扰等因素对水生食物网影响的研究中(Layman et al, 2007b; Delong et al,2011; Jackson et al, 2012)。
目前国内南海区域相关的生态学研究多侧重于生物群落多样性及其结构特征的季节和空间变化等方面, 而关于营养结构的研究十分欠缺, 仅有的报道所采用的方法为胃含物分析法(张月平, 2005)和模型法(陈作志等, 2010), 在应用稳定同位素方法示踪生态系统能流途径和分析食物网营养结构等方面的研究鲜有报道(杨国欢等, 2013)。为此, 本研究利用碳氮稳定同位素技术探讨南沙群岛西南部陆架区底层鱼类的碳和氮稳定同位素组成特征, 分析底层鱼类的营养位置, 评析食物网的营养层次、冗余程度及生态位宽幅等, 以期在丰富生态学研究内容的同时, 为南沙群岛西南部陆架区渔业资源的科学管理和持续利用提供理论依据。
鱼类样品采自2013年9月在南沙群岛西南部陆架区(图 1)进行的底层单拖网调查, 网具规格为128.00m×92.26m (48.90m), 网衣全长 92.26m, 网口周长128.00m, 浮纲长48.90m, 沉纲长59.40m, 网口目大300mm, 网囊目大50mm, 拖网时间为1h, 航速3节。样品带回实验室分类鉴定和个体全长测定后,进行稳定同位素样品采集。鱼类取其背部白色肌肉作为分析样品。浮游动物桡足类采用大型浮游生物网(网孔直径为 505μm)由水底至水表垂直采集, 用孔径为 0.7μm 玻璃纤维滤膜(Whatman GF/F)抽滤过的海水清养 2h使其排除消化道内含物, 再用蒸馏水将其洗净后取整体作为分析样品。将以上稳定同位素样品在60°C下烘48h至恒重, 用研钵将样品研磨成粉末,放入干燥器中保存待测。
样品的稳定同位素比值在中国农业科学院农业环境稳定同位素实验室进行测定。所用仪器为 Vario PYRO Cube型元素分析仪和Isoprime—100型稳定同位素比值分析仪, 获得的稳定同位素比值用δ表示:
其中, X=13C或15N; R=13C/12C或15N/14N; Rsample为样品的同位素比值, Rstandard为标准物质的同位素比值。碳和氮同位素标准样品分别采用 VPDB(拟箭石)和大气氮, 为保证实验结果的准确性和仪器的稳定性, 每测试12个样品穿插一个标样进行校正。样品δ13C和δ15N值分析精度为±0.2‰。
鱼类的营养位置(TP)通过如下公式计算:
式中, δ15Nbaseline为基线生物的 δ15N 值(即 λ=1时,δ15Nbaseline为生产者 δ15N, 而 λ=2 时, δ15Nbaseline为初级消费者δ15N值), 本研究用浮游动物桡足类的δ15N值为 δ15Nbaseline。δ15Nconsumer为鱼类的 δ15N 值, Δδ15N 为营养级传递过程中 δ15N的富集值, 每营养级的平均值约为3.4‰(Post, 2002)。
另外, 以 δ13C和 δ15N为横及纵坐标, 绘制不同鱼类种类的δ13C—δ15N值的双位图, 并以此计算了基于稳定同位素量化的营养结构的群落范围指标(Community-wide metrics) (Cornwell et al, 2006; Layman et al, 2007a, 2007b), 该指标包括如下六个参数:
(1) δ13C的范围(CR): 具有最高δ13C和最低δ13C值的两个物种之间的δ13C值距离(δ13C最高值-δ13C最低值)。
(2) δ15N的范围(NR): 具有最高δ15N和最低δ15N值的两个物种之间的δ15N值距离(δ15N最高值-δ15N最低值)。
(3) 总面积(TA): 由所有物种在 δ13C—δ15N双位图上组成的多边形面积。
(4) 到重心的平均距离(CD): 每一个物种到δ13C—δ15N双位图重心的平均欧氏距离, 此重心是食物网中所有物种的δ13C和δ15N的平均值。
(5) 平均最近相邻距离(NND): δ13C—δ15N 双位图内每个物种与其最近的相邻物种的平均欧氏距离。
图1 南沙群岛西南部陆架区地理位置和采样站位示意图Fig.1 Map of the southwestern continental shelf of Nansha Islands and location of sampling stations
(6) 最近相邻距离的标准偏差(SDNND): δ13C—δ15N双位图上每个物种与其最近相邻物种欧氏距离标准偏差的平均值。
以上各参数计算方法参考Layman等(2007a)。
调查期间共采集鱼类24种, 隶属于8 目 20 科22 属, 分别为鲈形目 9科 9属 9种, 鲀形目 2科 2属2种, 鲉形目2科3属3种, 鲽形目1科1属1种,鮟鱇目3科3属3种, 灯笼鱼目1科2属3种, 鼠鲨目1科1属2种及鳐形目1科1属1种。
鱼类的全长范围为5.6—336cm, 除带鱼(Trichiurus haumela)、斑鳐(Raja kanojei)、狐形长尾鲨(Alopias vulpinus)和浅海长尾鲨(Alopias pelagicus)外, 其它鱼类的全长均小于30cm(表1)。
稳定同位素结果显示, 南沙群岛西南部陆架区底层鱼类的平均 δ13C 值在–20.4‰ (鳞首方头鱼 C.squamiceps)— –17.0‰ (浅海长尾鲨 A. pelagicus)之间,均值为(–19.1±0.8)‰; δ15N 的均值范围为 7.9‰ (弓背鳄齿鱼 C. atridorsalis)—12.2‰ (浅海长尾鲨 A.pelagicus), 均值为(9.7±1.0)‰ (表 1)。
根据 δ13C—δ15N值的双位图(图 2), 得出基于稳定同位素量化的营养结构的群落范围指标: CR和NR值分别为3.4和4.3, TA值约为5.8, CD值为1.0, NND及SDNND值分别为0.37和0.43。
表1 南沙群岛西南部陆架区底层鱼类的全长范围、δ13C值、δ15N值和全长的平均值及标准差Tab.1 Average total length,δ13C, and δ15N value(average ± SD) of demersal fish species in southwestern continental shelf of Nansha Islands
此外, 通过 δ15N值及营养位置的计算公式得出,南沙群岛西南部陆架区底层鱼类的平均营养位置为3.58±0.29, 弓背鳄齿鱼(C. atridorsalis)的最低, 为3.06±0.02; 浅海长尾鲨(A. pelagicus)的最高, 为4.33±0.11。除狐形长尾鲨(A. vulpinus)和浅海长尾鲨(A.pelagicus)的营养位置高于 4.0外, 其余 22种鱼类均集中在3.0— 4.0之间(图3)。
近二十多年来, 南沙群岛西南部陆架区底拖网作业成为我国南沙群岛海域渔业的重要组成部分(陈丕茂, 2003; 陈国宝等, 2005; 黄梓荣, 2005)。长期的生产和渔业资源调查资料表明, 该海域主要渔获种类有 20多种, 其中以蛇鲻属(Saulida)、大眼鲷属(Priacanthus)等底层鱼类为主(钟智辉等, 2005), 与本研究所获取的样本种类类似。随着捕捞强度的增大,该海域的渔获率和渔获质量已有所下降, 鱼类种类呈现小型化、低龄化趋势, 渔业资源结构发生了变化(陈丕茂, 2003)。在开发利用的同时, 合理的保护已成为渔业资源可持续发展的重要前提。因此, 利用科学有效的方法评估鱼类生物群落的食物网结构和营养关系是持续利用和科学保护渔业资源的重要基础。
本研究结果显示, 南沙群岛西南部陆架区底层鱼类群落的 CR值为 3.4, 远低于澳大利亚莫顿湾的9.0及美国红树林生境的 11.2(Melvilleet al, 2005;Vasletet al, 2012)。CR值表征食物网中初始食源的多样性特征, CR值越低, 表明食物网中的初始食源越少, 反之则越多(Laymanet al, 2007a)。澳大利亚莫顿湾和美国红树林生境均位于沿岸海域, 初始食源丰富多样, 有红树植物、海草、底栖藻类和浮游植物等,该区域鱼类及其饵料生物的食源选择性大, 是这些海域鱼类食物网营养结构具有较高CR值的主要原因(Melville et al, 2005)。同时多样化的初始食源也为鱼类食物网营养生态位的多样化提供了物质基础。而南沙群岛西南部陆架区远离大陆, 而且水深较深, 除浮游植物外, 没有发现大型藻类和陆源输入的初始食源。与加泰罗尼亚海域和坎伯兰海峡的鱼类营养结构研究结果一致(Fanelli et al, 2011; McMeans et al, 2013),初始食源单一, 是导致南沙群岛西南部陆架区底层鱼类群落CR值较低的主要原因。
图2 鱼类的δ13C和δ15N值的双位图Fig.2 Stable isotope biplots of δ13C and δ15N values of the demersal fish species
图3 鱼类的平均营养位置Fig.3 Mean trophic positions (±SD) of the demersal fish species
NR值代表食物网的垂直结构, NR值越高表示食物网中消费者占有更多的营养层次, 也意味着食物链长度越长(Layman et al, 2007a)。南沙群岛西南部陆架区底层鱼类群落的 NR值为 4.3, 即鱼类群落的δ15N差值为4.3‰, 由于δ15N值在营养级传递过程中每营养级的平均值约为 3.4‰(Post, 2002), 由此换算成营养层次为1.3个营养层次, 而鱼类的营养级通常在2.0—5.0之间(Pauly et al, 2005), 为3个营养层次,因此表明鱼类食物网的营养层次较少, 其与鱼类的营养位置跨度仅为 1.27这一计算结果是相吻合的。Al-Habsi等(2008)对西阿拉伯海及 Nilsen等(2008)对挪威南峡湾鱼类营养结构的研究中也有类似报道。但是, 南沙群岛西南部陆架区食物网中消费者最高营养位置为浅海长尾鲨的 4.33±0.11, 也即是该海域的食物链长度, 却高于西阿拉伯海及挪威南峡湾(Al-Habsi et al, 2008; Nilsen et al, 2008)。Pimm(1982)认为, 初级生产力较高的区域, 能量可以维持并传递给更高营养级的生物。因此, 南沙群岛西南部陆架区因受温跃层阻隔及长期性内波现象的影响, 底层营养盐丰富、有较高的生产力, 饵料生物生物量高(杜飞雁等, 2014; 中国科学院南沙综合科学考察队等,1996), 致使该海域食物链长度较阿拉伯海和挪威南峡湾长。
TA和CD值分别代表食物网营养级多样性的总程度和平均程度(Layman et al, 2007a)。通过计算, 南沙群岛西南部陆架区底层鱼类群落的TA和CD值分别为 5.8和 1.0, 均低于 Murdoch等(2013)及 Schmidt等(2009)对水域生态系统鱼类群落的研究结果, 表明该海域底层鱼类食物网营养级多样性的总程度和平均程度均较低。TA值在一定程度上与CR和NR值相关(Layman et al, 2007a), 因此CR和NR值影响了TA值的高低。CR和 NR值主要受人为因素的影响, 如人工填海所造成的栖息地破坏能降低食物网初始食源的多样性程度, 使得 CR值降低; 过度捕捞导致鱼类营养级降低(Pauly et al, 1998), 造成NR值降低。陈丕茂(2003)和黄梓荣(2005)认为, 过度捕捞使得南沙群岛西南部陆架区大型捕食者缺乏, 导致系统的捕食压力降低, 结果小型鱼类容易在系统内占据优势地位, 使得渔获物的平均营养级下降(Pauly et al,1998)。由于南沙群岛西南部陆架区不存在栖息地破坏, 因此底层鱼类食物网营养级多样性的总程度和平均程度较低主要应与该海域捕捞强度较大有关。
NND和 SDNND值反映了食物网营养冗余度的高低。当食物网中具有相似生态营养级的物种占多数时, NND值较低, 而此时食物网营养冗余程度较高,群落中不同种类之间的营养生态位比较均匀, 宽幅较小。与之类似, 较低的SDNND值意味着营养级分布更均匀, 营养冗余程度较高(Layman et al, 2007a)。南沙群岛西南部陆架区底层鱼类群落 NND和SDNND值仅分别为0.37和0.43, 远低于河口及滨海生境(Abrantes et al, 2014; Sabeel et al, 2015), 说明该海域底层鱼类食物网的营养冗余程度较上述两个海域的高。由营养位置的计算结果可知, 本研究所获取的鱼类均为肉食性鱼类, 而且很多种类食性相近(杨纪明, 2001; 张月平, 2005)。其中, 除狐形长尾鲨和浅海长尾鲨为三级消费者外, 其余 22种鱼类的营养位置均集中在3.0— 4.0之间。此外, 还存在一些同类相食的种类, 如多齿蛇鲻和带鱼等(颜云榕等, 2010,2012)。表明南沙群岛西南部陆架区底层鱼类不同种类之间的营养生态位宽幅较小, 重叠程度较高, 食物竞争激烈。
在δ13C和δ15N值所围成的双位图中, 位于不规则多边形顶点的浅海长尾鲨和狐形长尾鲨作为顶级捕食者, 其 δ13C和 δ15N值均大于其它鱼类, 在整个营养框架中具有重要的作用。如果这两种鱼类在食物网中缺失, 将导致度量参数CR、NR和TA值降低, 也就是说鱼类食物网的营养多样性总程度会下降, 从而影响整个食物网的营养结构(Layman et al, 2007a)。与之不同, 如果多齿蛇鲻(δ13C=(–18.7±0.3)‰, δ15N =(10.2±0.3)‰)缺失将不会导致CR、NR和 TA值发生变化, 因为长蛇鲻(δ13C=(–18.8±0.2)‰, δ15N =(10.2±0.3)‰)和 单棘 躄 鱼(δ13C=(–18.7±0.1)‰, δ15N =(10.2±0.2)‰)的营养生态位与多齿蛇鲻的很相似, 它们相当于冗余种类。它们当中某一种类的缺失不会影响食物网的营养多样性总程度, 也不会引起生态系统内其它物种的缺失, 同时对整个群落和生态系统的结构和功能不会造成太大的影响。与此类似的还有条尾鲱鲤和勒氏蓑 鲉 以及瓦氏软鱼和带鱼。因此, 根据以上分析, 在对南沙群岛西南部陆架区渔业资源进行开发利用时, 可根据目标鱼种在该海域生态系统营养结构中的实际位置和作用, 确定相应可捕量, 加大对关键物种和功能群的保护力度。如在南沙群岛西南部陆架区应禁止捕捞浅海长尾鲨和狐形长尾鲨等高营养等级鱼类, 而对多齿蛇鲻、条尾鲱鲤和带鱼等冗余种类可进行适度捕捞, 以维持鱼类群落营养结构的完整性, 在渔业资源合理开发和持续利用的同时,有效的保护海洋生态系统的安全发展。
本文利用稳定同位素方法初步分析了南沙群岛西南部陆架区底层鱼类的营养结构, 结果表明: 该海域鱼类以肉食性为主, 初始食源较为单一; 鱼类食物网营养层次较少, 营养级多样性的总程度和平均程度均较低, 营养冗余程度较高, 不同种类之间的营养生态位幅宽较小, 重叠程度较高。此外, 在对该海域渔业资源进行开发利用时, 应禁止捕捞浅海长尾鲨和狐形长尾鲨这类在南沙群岛西南部陆架区底层鱼类群落营养结构中起着重要作用的种类, 而一些冗余种类(如多齿蛇鲻、条尾鲱鲤和带鱼等)可以适度捕捞, 以维持底层鱼类群落营养结构的完整性, 确保海洋生态系统的安全发展。
致谢 中国水产科学研究院南海水产研究所邱永松研究员在写作过程给予指导, 刘华雪副研究员、钟智辉、许友伟、周艳波、杨兵和“南锋”调查船全体工作人员在样品采集过程提供的帮助和支持, 谨致谢忱。
中国科学院南沙综合科学考察队, 中国水产科学研究院南海水产研究所, 1996. 南沙群岛西南部陆架海区底拖网渔业资源调查研究专集. 北京: 海洋出版社, 1—125
杜飞雁, 王雪辉, 谷阳光等, 2014. 南沙群岛西南大陆斜坡海域浮游动物的垂直分布. 海洋学报, 36(6): 94—103
杨纪明, 2001. 渤海鱼类的食性和营养级研究. 现代渔业信息,16(10): 10—19
杨国欢, 侯秀琼, 孙省利等, 2013. 流沙湾食物网结构的初探——基于稳定同位素方法的分析结果. 水生生物学报,37(1): 150—156
张月平, 2005. 南海北部湾主要鱼类食物网. 中国水产科学,12(5): 621—631
陈丕茂, 2003. 南沙群岛西南部陆架 17种鱼类最佳开捕规格和多鱼种拖网最佳网目尺寸. 中国水产科学, 10(1):41—45
陈作志, 邱永松, 2010. 南海北部生态系统食物网结构、能量流动及系统特征. 生态学报, 30(18): 4855—4865
陈国宝, 李永振, 2005. 南海主要珊瑚礁科鱼类的组成与分布.南方水产科学, 1(3): 18—25
钟智辉, 陈作志, 刘桂茂, 2005. 南沙群岛西南陆架区底拖网主要经济渔获种类组成和数量变动. 中国水产科学, 12(6):796—800
黄梓荣, 2005. 南沙群岛西南陆架区金线鱼资源与管理的研究.南方水产, 1(4): 18—23
颜云榕, 王田田, 侯 刚等, 2010. 北部湾多齿蛇鲻摄食习性及随生长发育的变化. 水产学报, 34(7): 1089—1098
颜云榕, 张武科, 卢伙胜等, 2012. 应用碳, 氮稳定同位素研究北部湾带鱼(Trichiurus lepturus)食性及营养级. 海洋与湖沼, 43(1): 192—200
Abrantes K G, Barnett A, Bouillon S, 2014. Stable isotope-based community metrics as a tool to identify patterns in food web structure in east African estuaries. Functional Ecology, 28(1):270—282
Al-Habsi S H, Sweeting C J, Polunin N V C et al, 2008. δ15N and δ13C elucidation of size structured food webs in a Western Arabian Sea demersal trawl assemblage. Marine Ecology Progress Series, 353: 55—63
Bersier L F, Banašek-Richter C, Cattin M F, 2002. Quantitative descriptors of food web matrices. Ecology, 83(9):2394—2407
Bitterlich G, Gnaiger E, 1984. Phytoplanktivorous or omnivorous fish? Digestibility of zooplankton by silver carp,Hypophthalmichthys molitrix (Val.). Aquaculture, 40(3):261—263
Cabana G, Rasmussen J B, 1996. Comparison of aquatic food chains using nitrogen isotopes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,93(20): 10844—10847
Cornwell W K, Schwilk D W, Ackerly D D, 2006. A trait-based test for habitat filtering: convex hull volume. Ecology, 87(6):1465—1471
Delong M D, Thorp J H, Thoms M C et al, 2011. Trophic niche dimensions of fish communities as a function of historical hydrological conditions in a Plains river. River Systems,19(3): 177—187
DeNiro M J, Epstein S, 1978. Influence of the diet on the distribution of carbon isotopes in animals. Geochimica et Cosmochimica Acta, 42(5): 495—506
Fanelli E, Cartes J E, Papiol V, 2011. Food web structure of deep-sea macrozooplankton and micronekton off the Catalan slope: insight from stable isotopes. Journal of Marine Systems, 87(1): 79—89
Fry B, 2006. Stable Isotope Ecology. New York: Springer,1—308
Fry B, Sherr E B, 1984. δ13C measurements as indicators of carbon flow in marine and freshwater ecosystems.Contributions in Marine Sciences, 27: 13—47
Gu B, Schell D M, Huang X H et al, 1996. Stable isotope evidence for dietary overlap between two planktivorous fishes in aquaculture ponds. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 53(12): 2814—2818
Heino J, 2009. Biodiversity of aquatic insects: spatial gradients and environmental correlates of assemblage-level measures at large scales. Freshwater Reviews, 2(1): 1—29
Jackson M C, Donohue I, Jackson A L et al, 2012.Population-level metrics of trophic structure based on stable isotopes and their application to invasion ecology. PLoS One,7(2): e31757
Kaartinen R, Roslin T, 2012. High temporal consistency in quantitative food web structure in the face of extreme species turnover. Oikos, 121(11): 1771—1782
Layman C A, Arrington D A, Montaña C G et al, 2007a. Can stable isotope ratios provide for community-wide measures of trophic structure? Ecology, 88(1): 42—48
Layman C A, Quattrochi J P, Peyer C M et al, 2007b. Niche width collapse in a resilient top predator following ecosystem fragmentation. Ecology Letters, 10(10):937—944
Lindeman R L, 1942. The trophic-dynamic aspect of ecology.Ecology, 23(4): 399—417
McMeans B C, Rooney N, Arts M T et al, 2013. Food web structure of a coastal Arctic marine ecosystem and implications for stability. Marine Ecology Progress Series,482: 17—28
Melville A J, Connolly R M, 2005. Food webs supporting fish over subtropical mudflats are based on transported organic matter not in situ microalgae. Marine Biology, 148(2):363—371
Michener R H, Schell D M, 1994. Stable isotope ratios as tracers in marine aquatic food webs. In: Lajtha K, Michener R H eds. Stable Isotopes in Ecology and Environmental Sciences.Oxford: Blackwell, 138—157
Murdoch A, Klein G, Doidge D W et al, 2013. Assessing the food web impacts of an anadromous Arctic charr introduction to a sub-Arctic watershed using stable isotopes. Fisheries Management and Ecology, 20(4): 302—314
Nilsen M, Pedersen T, Nilssen E M et al, 2008. Trophic studies in a high-latitude fjord ecosystem-a comparison of stable isotope analyses (δ13C and δ15N) and trophic-level estimates from a mass-balance model. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 65(12): 2791—2806
Paine R T, 1980. Food webs: linkage, interaction strength and community infrastructure. Journal of Animal Ecology, 49(3):666—685
Pauly D, Christensen V, Dalsgaard J et al, 1998. Fishing down marine food webs. Science, 279(5352): 860—863
Pauly D, Palomares M L, 2005. Fishing down marine food web:it is far more pervasive than we thought. Bulletin of Marine Science, 76(2): 197—212
Pimm S L, 1982. Food Webs. Netherlands: Springer, 1—11
Polis G A, Winemiller K O, 1996. Food Webs: Integration of Patterns & Dynamics. US: Springer, 1—464
Post D M, 2002. Using stable isotopes to estimate trophic position: models, methods, and assumptions. Ecology, 83(3):703—718
Sabeel R A O, Ingels J, Pape E et al, 2015. Macrofauna along the Sudanese Red Sea coast: potential effect of mangrove clearance on community and trophic structure. Marine Ecology. 36(3): 794—809
Schmidt S N, Vander Zanden M J, Kitchell J F, 2009. Long-term food web change in Lake Superior. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 66(12): 2118—2129
Sheaves M, 2006. Scale-dependent variation in composition of fish fauna among sandy tropical estuarine embayments.Marine Ecology Progress Series, 310: 173—184
Vander Zanden M J, Rasmussen J B, 1999. Primary consumer δ13C and δ15N and the trophic position of aquatic consumers.Ecology, 80(4): 1395—1404
Vaslet A, Phillips D L, France C et al, 2012. The relative importance of mangroves and seagrass beds as feeding areas for resident and transient fishes among different mangrove habitats in Florida and Belize: evidence from dietary and stable-isotope analyses. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 434—435: 81—93