周络通胶囊激活转录因子Nrf2抑制糖尿病周围神经病变小鼠氧化应激

2013-12-06 08:04:08张会欣朱慧明崔庆飞何奇龙高学东王宏涛
中国药理学通报 2013年1期
关键词:氧化应激抗氧化引物

张会欣,王 超,朱慧明,崔庆飞,何奇龙,高学东,王宏涛

(1.河北以岭医药研究院国家中医药管理局重点研究室,河北石家庄 050035;2.河北省人民医院临床医学研究中心,河北石家庄 050051;3.石家庄以岭药业股份有限公司,河北石家庄 050035)

糖尿病周围神经病变(diabetic peripheral neuropathy,DPN)是糖尿病慢性并发症之一,其发病机制尚未阐明,但大量研究表明氧化应激在DPN的发生中起到了重要作用[1-2]。NF-E2相关因子2(nuclear factor E2-related factor 2,Nrf2)是一种新近发现的转录因子,它可以启动多种抗氧化酶和Ⅱ相解毒酶的活化,对抗氧化应激所致的疾病损伤[3],但Nrf2在DPN中氧化应激的作用报道并不多见。周络通胶囊为已获临床批件的治疗DPN的中药新药,由黄芪、桂枝、当归、生地、细辛等12味中药组成,具有通络祛瘀止痛之功效,动物实验表明周络通对DPN显示了很好的疗效[4]。本实验用周络通胶囊治疗DPN小鼠,观察Nrf2核转位对DPN氧化应激损伤的作用。

1 材料与方法

1.1 动物 KK/Upj-Ay小鼠,30~40 g;C57BL/6小鼠,25 ~30 g,均为 SPF 级,♂,12 周龄,购于北京华阜康生物科技股份有限公司,动物合格证号:0225144。

1.2 药品与试剂 周络通胶囊由黄芪、桂枝、当归、生地、细辛等12味中药组成,石家庄以岭药业股份有限公司生产;糖化血红蛋白(glycosylated hemoglobin,HbA1c)试剂盒、丙二醛 (malondialdehyde,MDA)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(glutathion peroxidase;glutathione peroxidase,GSH-Px)、过氧化氢酶(hydrogen peroxidase,CAT)试剂盒购自南京建成生物研究所;Nrf2、血红素氧合酶-1(heme oxygenase-1,HO-1)、γ-谷氨酰半胱氨酸合成酶(γ-glutamyl cysteine synthetase,γ-GCS)引物由上海生工生物技术公司合成;兔抗Nrf2多克隆抗体、兔抗HO-1多克隆抗体、兔抗γ-GCS多克隆抗体购自美国Abcam公司。

1.3 仪器 BL-420F生理记录仪(成都泰盟);7080全自动生化分析仪(日立);7300荧光定量PCR仪(ABI公司);凝胶成像分析仪(Biorad)。

1.4 动物分组与给药 KK/Upj-Ay小鼠,40只,按空腹血糖值(FBG)分为4组:模型组(Model)、周络通高、中、低剂量组(ZLT-H,ZLT-M,ZLT-L),另设C57BL/6小鼠为对照组(Control),每组10只动物。周络通高、中、低剂量组分别灌胃给予6.85、3.43、1.71 g生药·kg-1的周络通胶囊,对照组和模型组给予等体积的蒸馏水,每日1次,连续12周。

1.5 坐骨神经传导速度(MNCV)测定[5]给药结束,小鼠麻醉后俯卧位固定,连接生理记录仪,在右侧坐骨切迹插入刺激电极,在踝部(远端)和左足底第2趾间分别插入记录电极,记录双通道复合动作电位(以两对记录电极间距离S(mm)除以两通道复合动作电位潜伏期之差△t(ms)来计算MNCV)。每间隔1 min,重复电刺激3次取其平均值,计算其MNCV。

1.6 血液指标测定 每月1次尾静脉采血,罗氏血糖仪测定FBG;给药结束取血,按试剂盒的说明书测定HbA1c含量;比色法测定SOD、GSH-Px活性和CAT、MDA 含量。

1.7 荧光定量PCR方法测定坐骨神经Nrf2、HO-1、γ-GCS mRNA的表达 取坐骨神经,提取RNA,1 μg RNA按说明书进行逆转录反应,荧光定量PCR仪扩增,Nrf2引物:上游:5'-AGTGACTCGGAAATGGAGGAG-3',下游:5'-TGTGCTGGCTGTGCTTTAGG-3',产物片段77bp;HO-1引物:上游:5'-GCTGGTGATGGCTTCCTTGT-3',下游:5'-ACTGGGTTCTGCTTGTTGCG-3',产物片段 75bp;γ-GCS 引物:上游:5'-GCACATCTACCACGCAGTCA-3',下游:5'-CAGAGTC TCAAGAACATCGCC-3',产物片段142bp;GAPDH引物:上 游:5'-TGCTGAGTATGTCGTGGAGTC-3',下游:5'-TGCTGAGTATGTCGTGGAGTC-3',产物片段143 bp。扩增条件:94℃,5 min预变性,94℃ 30 s变性、55℃ 30 s退火、72℃ 30 s延伸,进行40个循环的扩增,于每个循环的延伸阶段收集荧光信号。扩增结束后进入分析界面,以GAPDH作为内参照,根据每个样本扩增曲线的Ct值计算各目的基因表达水平的相对定量值,对照组设置为1,最终结果计为与对照组进行比较后的相对定量值RQ用于统计分析。

1.8 Western blot法检测坐骨神经总 Nrf2、核Nrf2、HO-1、γ-GCS蛋白的表达 取坐骨神经20 mg,加入200 μl裂解液提取总蛋白质(核内蛋白),Bradford法测定蛋白浓度,取40 μg蛋白上样,10%SDS-PAGE电泳转膜至PVDF膜,5%脱脂奶粉封闭,一抗(1∶200)孵育过夜,加入相应的二抗(1∶1 000),漂洗,化学发光法显色,对条带进行吸光度积分扫描。GAPDH作为内参照。用目的蛋白吸光度值/内参照吸光度值的比值进行比较。

2 结果

2.1 FBG及HbA1c的变化 模型组FBG明显高于对照组,周络通治疗后FBG逐渐下降,高剂量组治疗12周后差异有统计学意义(P<0.05);其中,模型组、周络通低、中、高剂量组各有1只小鼠死亡。给药治疗12周后,模型组HbA1c明显高于正常组,周络通高剂量组比模型组HbA1c明显降低(P<0.01)。见 Tab 1,2。

Tab 1Effects of ZLT on FBG in KK mice(±s)

Tab 1Effects of ZLT on FBG in KK mice(±s)

*P <0.05,**P <0.01 vs model group

Group FBG/mmol·L -1 Before 4 wk 8 wk 12 wk Control 5.99 ±1.33** 4.98 ±0.89** 5.97 ±1.01** 6.12 ±0.98**Model 12.59 ±2.68 11.92 ±2.84 12.57 ±3.51 11.47 ±2.89 ZLT-L 12.06 ±2.08 11.96 ±1.64 11.80 ±1.91 10.32 ±1.89 ZLT-M 13.50 ±1.50 13.29 ±2.87 10.92 ±2.90 10.18 ±2.77 ZLT-H 12.08 ±2.13 11.92 ±2.28 10.13 ±1.32 8.58 ±1.47*

2.2 坐骨神经传导速度的变化 模型组比对照组MNCV明显减慢(P<0.01),周络通低、中、高剂量组MNCV与模型组比较明显增快(P<0.05,P<0.01)。见Tab 2。

Tab 2Effects of ZLT on MNCV in KK mice(±s)

Tab 2Effects of ZLT on MNCV in KK mice(±s)

*P <0.05,**P <0.01 vs model group

Group n HbA1c/% MNCV/m·s -1 Control 10 3.98 ±0.78** 24.85 ±4.23**Model 9 9.53 ±1.29 5.20 ±1.49 ZLT-L 9 9.12 ±0.99 7.71 ±1.81*ZLT-M 9 8.90 ±0.82 9.74 ±1.83**ZLT-H 9 6.35 ±1.14** 10.71 ±1.81**

2.3 氧化指标的变化 模型组比对照组 SOD、GSH-Px、CAT活性均明显下降(P<0.01),MDA 含量明显升高(P<0.01);与模型组比较,周络通低剂量组MDA含量降低(P<0.05),中剂量组 SOD、GSH-Px活性上升(P<0.05),MDA含量降低(P<0.05),高剂量组 SOD、GSH-Px、CAT活性均上升(P<0.01),MDA含量降低(P<0.01)。见Tab 3。

Tab 3 Effects of ZLT on SOD,GSH-Px,CAT and MDA level in KK mice(±s)

Tab 3 Effects of ZLT on SOD,GSH-Px,CAT and MDA level in KK mice(±s)

*P<0.05,**P<0.01 vs model group

Group n SOD/U·ml-1 GSH-Px/U·ml-1 CAT/U·g-1 MDA/μmol·L -1 Control 10 80.34 ±12.39** 91.68±20.39** 219.95±32.86** 5.59 ±1.84**Model 9 44.61 ±10.56 45.62 ±10.69 117.28 ±25.64 12.68 ±3.86 ZLT-L 9 49.26 ±9.84 52.69 ±10.58 130.64 ±28.64 9.11 ±2.06*ZLT-M 9 60.81 ±10.97* 59.88 ±11.35* 136.52 ±27.92 8.59 ±1.94*ZLT-H 9 68.95 ±11.76** 70.66±14.21** 164.27±30.23** 7.65 ±1.54**

2.4 坐骨神经 Nrf2、HO-1、γ-GCS mRNA 表达的变化 模型组HO-1、γ-GCS mRNA表达明显高于对照组(P<0.01),与模型组比较,周络通低、中、高剂组HO-1 mRNA表达明显上升(P<0.05,P<0.01),周络通低、高剂量组γ-GCS mRNA表达明显上升(P<0.01),Nrf2 mRNA表达在各组无差异(P>0.05)。见 Tab 4,Fig 1。

Tab 4 Effects of ZLT on Nrf2,HO-1,γ-GCS mRNA expression in KK mice(±s,n=3)

Tab 4 Effects of ZLT on Nrf2,HO-1,γ-GCS mRNA expression in KK mice(±s,n=3)

*P<0.05,** P<0.01 vs model group

Group NRF HO-1 γ-GCS Control 1.02 ±0.10 1.02 ±0.13** 1.02 ±0.11**Model 1.00 ±0.10 2.94 ±0.31 4.21 ±0.45 ZLT-L 1.16 ±0.12 3.78 ±0.40* 7.01 ±0.70**ZLT-M 1.23 ±0.11 4.01 ±0.35** 5.35 ±0.47 ZLT-H 0.98 ±0.08 5.70 ±0.42** 8.48 ±0.61**

Fig 1 PCR amplification curve of Nrf2,HO-1,γ-GCS and GAPDH

2.5 坐骨神经总 Nrf2、核 Nrf2、HO-1、γ-GCS 蛋白表达的变化 模型组核Nrf2、HO-1、γ-GCS蛋白表达明显高于对照组(P<0.05,P<0.01),与模型组比较,周络通中、高剂量组核 Nrf2、HO-1、γ-GCS蛋白表达明显上升(P<0.05,P<0.01),总Nrf2蛋白表达在各组无差异(P>0.05)。见Tab 5,Fig 2。

Tab 5 Effects of ZLT on Nrf2,HO-1,γ-GCS protein expression in KK mice(±s,n=3)

Tab 5 Effects of ZLT on Nrf2,HO-1,γ-GCS protein expression in KK mice(±s,n=3)

*P <0.05,**P <0.01 vs model group

Group Total Nrf2 Intranuclear Nrf2 HO-1 γ-GCS Control0.55 ±0.06 0.38 ±0.05*0.37 ±0.05** 0.30 ±0.04*Model 0.58 ±0.07 0.59 ±0.08 0.61 ±0.06 0.47 ±0.06 ZLT-L 0.61 ±0.07 0.65 ±0.09 0.67 ±0.09 0.52 ±0.06 ZLT-M 0.57 ±0.08 0.81 ±0.10*0.82 ±0.11* 0.75 ±0.07**ZLT-H 0.59 ±0.06 0.93 ±0.12*0.88 ±0.09* 0.89 ±0.09**

3 讨论

在机体组织正常情况下,氧化系统和抗氧化系统处于动态平衡状态。当机体受到有害刺激时,如高血糖,可以通过多种途径介导产生过多的氧自由基,导致氧化与抗氧化系统失衡,引起组织损伤[6]。机体内存在有非酶抗氧化系统和酶抗氧化系统,前者包括维生素 C、维生素 E、谷胱甘肽等,后者有SOD、CAT、GSH-Px等,抗氧化系统防御功能损害也会导致组织损伤。本实验发现,在DPN小鼠模型中,血清MDA含量明显升高,SOD、GSH-Px、CAT活性明显下降,说明高糖状态下,自由基产生增多和(或)抗氧化防御功能下降导致了DPN小鼠氧化应激的产生。周络通干预组在治疗12周时能降低糖化血红蛋白,提高坐骨神经传导速度,并能降低血清中MDA的含量,提高SOD、GSH-Px、CAT活性,同时光镜观察到周络通能改善坐骨神经的轴索退变,崩解病理改变,提示周络通能有效减低DPN小鼠的氧化应激损伤,发挥其保护作用。

Fig 2 Effects of ZLT on Nrf2,HO-1,γ-GCS protein expression

Nrf2 是一种转录因子,最新的研究显示[7-8],敲除Nrf2基因的小鼠易于发生氧化应激,机体内的酶抗氧化系统有可能是通过Nrf2的转录激活启动的。正常情况下,Nrf2和它的细胞质接头蛋白Keap1作为细胞抗氧化反应的中枢调节者,偶联被封闭在细胞质中,在氧化应激状态下,Keap1构型发生变化,Nrf2与Keap1分离,Nrf2向细胞核中转运和活化,启动其下游多种抗氧化蛋白表达和Ⅱ相解毒酶的合成,如 HO-1、γ-GCS、SOD、CAT 等,减轻氧化应激引起的损伤[9],已有文献[10-11]报道了一些化学物质或药物能够激活Nrf2、启动对靶基因的调控,减轻组织损伤。

我们的实验观察到DPN模型小鼠坐骨神经中核内Nrf2蛋白表达明显升高,同时 HO-1、γ-GCS mRNA和蛋白表达亦明显升高,表明高糖引起的DPN导致了 Nrf2核转录,进而导致下游 HO-1、γ-GCS表达升高,给予周络通干预后,核内Nrf2、HO-1、γ-GCS表达进一步升高,表明周络通能有效促进Nrf2的核转位,进而增加了抗氧化蛋白HO-1和γ-GCS的表达,提示周络通对DPN小鼠的抗氧化应激损伤与其促进Nrf2核转位有关。

[1]王 萌,王瑞英,王素星.氧化应激与糖尿病周围神经病变[J].临床荟萃,2009,24(5):449-51.

[1]Wang M,Wang R J,Wang S X.Oxidatio and diabetic peripheral neuropathy[J].Clin Focus,2009,24(5):449-51.

[2]Al-Nimer M S,Al-Ani F S,Ali F S.Role of nitrosative and oxidative stress in neuropathy in patients with type 2 diabetes mellitus[J].J Neurosci Rural Pract,2012,3(1):41-4.

[3]Williamson T P,Johnson D A,Johnson J A.Activation of the Nrf2-ARE pathway by siRNA knockdown of Keap1 reduces oxidative stress and provides partial protection from MPTP-mediated neurotoxicity[J].Neurotoxicology,2012,33(3):272-9.

[4]封卫毅,侯家玉,陈 伟,等.周络通对糖尿病大鼠坐骨神经功能、醛糖还原酶活性及抗自由基能力的影响[J].北京中医药大学学报,2004,27(1):45-8.

[4]Feng W Y,Hou J Y,Chen W,et al.Effects of Zhouluotong on the function of sciatic nerve,activity of aldose reductase and ability of aldose reductase against free radicals in the rats with diabetes[J].J Beijing Univ TCM,2004,27(1):45-8.

[5]姚鸿萍,封卫毅,魏友霞,董海燕.大鼠坐骨神经传导速度测定的方法学考察[J].中国药房,2011,22(1):18-20.

[5]Yao H P,Feng W Y,Wei Y X,Dong H Y.Methodology of the determination of sciatic nerve conduction velocity in rats[J].ChinaPharmacy,2011,22(1):18-20.

[6]Stanton R C.Oxidative stress and diabetic kidney disease[J].Curr Diab Rep,2011,11(4):330-6.

[7]Wruck C J,Fragoulis A,Gurzynski A,et al.Role of oxidative stress in rheumatoid arthritis:insights from the Nrf2-knockout mice[J].Ann Rheum Dis,2011,70(5):844-50.

[8]Nakamura B N,Lawson G,Chan J Y,et al.Knockout of the transcription factor NRF2 disrupts spermatogenesis in an age-dependent manner[J].Free Radic Biol Med,2010,49(9):1368-79.

[9]René C,Lopez E,Claustres M,et al.NF-E2-related factor 2,a key inducer of antioxidant defenses,negatively regulates the CFTR transcription[J].Cell Mol Life Sci,2010,67(13):2297-309.

[10]李 强,赵曙光,王旭霞,等.姜黄素激活转录因子Nrf2对人肝细胞氧化应激的影响[J].胃肠病学和肝病学杂志,2010,19(2):154-6.

[10]Li Q,Zhao S G,Wang X X,et al.Effect of curcumine on intracellar ROS in cultured human hepatocyte by upregulating the activity of Nrf2[J].Chin J Gastroent Hepat,2010,19(2):154-6.

[11]Farombi E O,Shrotriya S,Na H K,et al.Curcumin attenuates dimethylnitrosamine-induced liver injury in rats through Nrf2-mediated induction of heme oxygenase-1[J].Food Chem Toxicol,2008,46(4):1279-87.

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